БШДЕКЕМХЕ ЙХЯКНПНДЮ

УЛУЧШЕНИЕ ЭКОЛОГИЧНОСТИ И ПОВЫШЕНИЕ ЭФФЕКТИВНОСТИ БИОХИМИЧЕСКИХ ПРОИЗВОДСТВХимия растительного сырья 2 (1998) N1 стр.33-43УДК 66.015.2УЛУЧШЕНИЕ ЭКОЛОГИЧНОСТИ И ПОВЫШЕНИЕ ЭФФЕКТИВНОСТИ БИОХИМИЧЕСКИХ ПРОИЗВОДСТВ╘ Н. А. Войнов, Р. А. Степень, С. М. Воронин, Д. В. БуйкоСибирский государственный технологический университет, г. Красноярск (Россия)E-mail: repyakh@pop3.kts.ruПредставлен новый подход к проведению культивирования аэробных микроорганизмов в турбулентнойпленке жидкости с целью улучшения экологичности и эффективности процесса ферментации. Разработанные пленочныебиореакторы и экологически чистая технология позволяют значительно интенсифицировать тепло массоперенос,снизить расход потребляемого газа и объем отработанной жидкости, увеличить производительность и концентрациюредуцирующих веществ в ферментативной среде и тем самым повысить рентабельность биохимических производств.ВведениеВажным стимулом развития производства является снижение его отходов, прежде всего тех, которые оказываютвредное воздействие на человека. В полной мере это относится к биохимическим предприятиям, отходы которыхсущественно загрязняют близлежащие территории [1]. Вследствие большого потребления технологическойводы и воздуха промышленная биотехнология является источником большого количества воздушных и водных выбросов.Их экологическая опасность определяется, в первую очередь, присутствием в выбросах живых клеток микроорганизмови субстрата, попадание которых в окружающую среду вызывает нежелательные и неконтролируемые изменения структурыэкологических ниш в почве и воде.Область применения микроорганизмов чрезвычайно велика. Микроорганизмы обладают высокой скоростью накоплениябиомассы, которая в 500-5000 раз выше, чем у растений или животных. Микробные клетки способны накапливатьбольшое количество белка. Благодаря высокой специфичности микроорганизмов в микробиологическом производствеотсутствует многостадийность. Биосинтез протекает в мягких условиях при 30≈45oС, рН 3≈7 и давлении~0,1 Мпа. Процесс менее трудоемок по сравнению с получением сельскохозяйственнойпродукции и органическим синтезом белков. Эти преимущества позволяют получать для животноводства и птицеводствамикробиологическим путем важнейшие кормовые добавки с высокой кормовой ценностью и в большом количестве.По данным ряда специалистов мировой дефицит белка оценивается в 30-35 млн. т. Основным направлением сниженияи ликвидации этого дефицита является производство биомассы посредством микробного синтеза. Однако строительствоновых микробиологических производств вызывает резкий протест общественности из-за серьезного загрязненияокружающей среды некоторыми компонентами жидких и газовых выбросов этих производств, обуславливающих острыереспираторные и аллергические заболевания у людей. Отработанная культуральная жидкость относится к высококонцентрированнымстокам, которые требуют глубокой очистки и утилизации. Так, при получении 1 т кормовых дрожжей расходуетсядо 300 м3 производственной воды, и отработанная жидкость содержит фураны, фенолы, терпены, соединенияфтора, мышьяка, соли тяжелых металлов и другие вредные вещества.В связи с этим возникает необходимость в создании принципиально новых экологически чистых и эффективныхпроизводств белково-витаминных концентратов и других продуктов микробиологического синтеза. Концепциясоздания экологически чистой технологии процесса ферментации изложена ранее [2]. Устранениезагрязняющих среду выбросов, наиболее эффективно осуществляется при организации замкнутых циклов по газуи жидкости. Однако это возможно только при существенном сокращении объема технологических потоков за счетпереработки концентрированных (неразбавленных) гидролизатов после их глубокого облагораживания и организацииразвитого контакта газа с жидкостью в биореакторе.Анализ известных способов взаимодействия газа с жидкостью показал, что на современном этапе наиболее эффективныпроцессы переноса импульса, тепла и массы, протекающие при контакте газа с культуральной жидкостью, стекающейв виде пленки по твердой пленкообразующей поверхности. Сравнение показателей газожидкостных биореакторов,представленное в таблице, также указывает на перспективность промышленного использования пленочных аппаратов.В пленочном биореакторе [3], (рис. 1) культуральная жидкость из емкостикультивирования 4 осевым насосом через циркуляционную трубу 5 поступает в верхнюю часть контактных труб 6.Рис. 1. Схема пл╦ночного биореактора: 1 ≈ осевой насос; 2 ≈ камера для газа; 3 ≈ теплообменная камера;4 ≈ емкость для культивирования; 5 ≈ циркуляционная труба; трубчатая насадка; 7 ≈ винтовая шероховатость(спираль); Т ≈ теплоноситель.Затем она интенсивно перемешиваясь, стекает в виде вращающейся турбулентной пленки вниз по внутреннейповерхности труб, обтекая витки винтовой спирали 7. При этом культуральная жидкость насыщается газом ииз нее отводятся продукты метаболизма, а также через стенки труб 6 осуществляется отвод или подвод тепла.Исследования [4 - 6] показали, что скорость переноса кислорода в турбулентнуюпленку составляет 10 кг/(м3ч) и более, поверхностный коэффициент массоотдачи (2 - 5)Ч10-2 м/с,что в десятки раз выше значений, достигаемых в известных промышленных биореакторах. Вследствие высокой скоростиподвода кислорода, отвода тепла и продуктов метаболизма пленочные биореакторы способны перерабатыватьвысококонцентрированные питательные среды (содержание редуцирующих веществ в пределах 30 ≈ 100 кг/м3)при достижении концентрации микроорганизмов в культуральной жидкости до 100 кг/м3. Это позволяетзначительно уменьшить габариты биореактора, на порядок снизить расход воды и газа, обеспечив тем самым ихкачественную очистку.ТаблицаПоказатели биореакторовГазлифтныйГазлифтный с механическими устройствамиС самовса сывающей мешалкойСтруйныйШахтныйПленочныйСкорость переноса кислорода, кг/(м3ч)1,1 - 4,04 - 770,4 - 0,71 - 310Объемный коэффициент массоотдачи, ч-1200 - 450450 - 10001000100 - 150250 - 4001500 - 4000Поверхностный коэффициент массоотдачи, м/с(1,3 - 5)Ч10-4(5 - 6)Ч10-46Ч10-4(0,4-0,7)Ч10-4(1,5 - 4)Ч10-4(2 - 5)Ч10-2Концентрация редуцирующих веществ, кг/м38 - 303030830100Удельный расход воздуха, м3/кг30 - 503429 - 4310190 - 10Концентрация биомассы (АСВ), кг/м34 - 10,5101041050 - 100Коэффициент заполнения0,330,70,40,330,330,8Удельный расход энергии, кВтЧч/кг0,8 - 1,752 - 33 - 40,4 - 0,50,6 - 0,70,6 - 1,4В пленочных биореакторах отвод тепла осуществляется непосредственно в зоне биохимической реакции, чтоне требует дополнительных конструктивных решений и не влияет на процессы переноса тепло- и массообмена.Вследствие интенсивного отвода продуктов метаболизма из пленки исключается их накапливание в культуральной жидкости,что свойственно для аппаратов других типов. Небольшие габариты пленочных биореаторов при высокой их производительностипозволяют проводить ферментацию при избыточном давлении и в стерильных условиях. Это увеличивает степеньнасыщения жидкости кислородом и дает возможность изменять концентрацию газа в культуральной жидкости в процессеферментации. Кроме того важно, что при проектировании пленочных биореакторов легко решаются проблемы масштабногоперехода и полученные в лабораторных условиях результаты могут быть без поправок перенесены на промышленные образцы.Создание малогабаритных пленочных биореакторов возможно только при больших плотностях орошения, которымсоответствует турбулентное течение пленки жидкости с высокими значениями критерия Рейнольдса. Поиск [4]способов увеличения удерживающей способности пленочного аппарата и стабилизации ее работы привел к использованиюна пленкообразующей поверхности крупномасштабной искусственной винтовой шероховатости. В этой связи в работепроведены комплексные исследования гидродинамики, тепло- и массообмена в пленке жидкости, стекающей по поверхностинасадок с крупномасштабной винтовой шероховатостью, разработаны и исследованы экологически чистые схемы выращивания микроорганизмов.Экспериментальная частьОсновными параметрами пленочного течения, которые необходимы при проведении расчетов биореактора и технологическихпараметров процесса ферментации являются средняя толщина пленки жидкости, коэффициенты тепло- и массоотдачи.Подача жидкости на поверхность трубы осуществлялась через кольцевой зазор шириной 10-25 мм. Изучался процессв трубах диаметром 27, 50 и 80 мм и длиной 0,7-6 м. Измерение толщины пленки жидкости на поверхности трубчатыхнасадок пленочного биореактора проводили [4] методами отсечки питания и фотографированияпри числе Рейнольдса 2000-100000. В качестве исследуемой жидкости использовалась вода с температурой 15-55оС,ферментативная среда на основе гидролизата и дрожжевая суспензия при 36-40оС. Вязкость дрожжевойсуспензии изменялась от 0,6Ч10-6 до 2,54Ч10-6 м2/с.При исследовании использовались дрожжи Candida scottii с концентрацией абсолютно сухих микроорганизмовx = 4 ≈ 120 кг/м3.Массоотдача в пленке жидкости изучалась [7] на примере абсорбции кислорода воздуха водой,водой с добавкой поверхностно-активных веществ (ПАВ), ферментативной средой на основе гидролизата и культуральнойжидкостью. Концентрация растворенного в жидкости кислорода измерялась с помощью датчика с тефлоновой мембраной,работающего на принципе гальванического элемента с серебряным катодом и цинковым анодом.Исследование [6] теплоотдачи в биореакторе проводились в пленке воды, воды с добавкойПАВ и культуральной жидкости. При расчетах коэффициент теплоотдачи относился к поверхности гладкой трубы.При нахождении количества переданного тепла учитывались его потери в окружающую среду с поверхности пленки.Расчет осуществлялся для участка с линейным распределением температуры по длине трубы по специально разработанной методике.Пpоцесс феpментации в туpбулентной пленке осуществлен [5, 7, 9]на пpимеpе выpащивания дpожжей Candida scottii в феpментативной сpеде на основе гидpолизата дpевесины. Выделяющеесяв пpоцессе биохимических реакций тепло отводилось водой.Температура культуpальной жидкости при ферментации поддерживалась на оптимальном уровне 36-38o С,кислотность среды - в диапазоне pH = 4,2...4,6. Измерение концентрации кислорода в емкости для культивиpованияи в пленке культуральной жидкости проводилось датчиком мембранного типа. Концентpация прессованных (75% влажности)дрожжей определялась вакуум-фильтpованием на воронке Бюхнеpа. Содержание редуцирующих веществ находили эбулиостатическим методом.Обсуждение результатовКак показали исследования [4] при стекании жидкости по гладкой поверхности насадкитолщина пленки не превышает 5 мм (рис. 2, точки 1 и 2), а при значениях числаРейнольдса Re > 50000 наблюдается нарушение равномерного стекания жидкости по периметру трубы, возникаетструйное течение. Кроме того, при наличии больших значений коэффициента кинематической вязкости дрожжевой суспензиипроисходит частичный срыв жидкости с поверхности пленки.Рис. 2. Зависимость средней толщины пленки дрожжевой суспензии, вязкостью n= 1 Є 10-6 м2/с от числа Рейнольдса при стекании по внутреннейстенке трубы диаметром d = 51 мм, длиной l = 1,6 м. Экспериментальные точки (1 ≈ 2) ≈ гладкаяповерхность трубы, (3 ≈ 6) ≈ поверхность с винтовой спиралью из проволоки при высоте выступаh = 1,85 мм; 3,0; 5,5; 6. Линии 1≈5 ≈ расчет по уравнениям работы [4]для винтовой спирали. Линия 6 данные для кольцевой шероховатости при h = 3 мм.Увеличение удерживающей способности насадки достигнуто путем организации течения по шероховатой поверхности.Это повышает трение жидкости о поверхность и приводит к росту толщины пленки, а отрыв пограничного слоя завыступом шероховатости обеспечивает интенсивное перемешивание пленки. Установка винтовой спирали, изготовленнойиз проволоки или ленты, на внутренней поверхности трубы является наиболее выгодным вариантом выполненияшероховатости, так как в этом случае центробежная сила, вызванная вращательным движением жидкости, стабилизируетпленочное течение. Толщина слоя турбулентной жидкости, по сравнению с ее стеканием по гладкой поверхноститрубы, увеличивается до пяти раз и может достигать 20 мм и более (рис. 2, точки 3≈6).Важнейшим преимуществом течения пленки жидкости по внутренней поверхности трубы с регулярной винтовой шероховатостьюявляется ее более равномерное распределение по периметру трубы при отклонении от вертикального положения.При выполнении отношения расстояния между витками спирали s к толщине витка (диаметр проволоки или толщиналенты из которых выполнена шероховатость) h равного 6 - 8 достигается максимальная толщина пленки жидкости.Величина средней толщины пленки дрожжевой суспензии при концентрации абсолютно сухих дрожжей в ней x < 80 кг/м3удовлетворительно рассчитывается по уравнениям полученным ранее [4].Результаты экспериментальных исследований массоотдачи в турбулентной пленке воды, стекающей по гладкойи шероховатой поверхностям представлены на (рис. 3). Исследования массообмена показали[6], что установка винтовой шероховатости на внутренней поверхности трубы является наиболеевыгодным вариантом по сравнению с другими известными [4] типами шероховатости. При этомкоэффициент массоотдачи (рис. 3, точки в, г, д) возрастает в десять и более раз по сравнениюс гладкой поверхностью.Рис. 3. Зависимость коэффициента массоотдачи от числа Рейнольдса при стекании пленки воды по гладкой(линии 1 и 2) и шероховатой (линии 3≈5) вертикальной стенке трубы при t = tg = 20oC:а ≈ внутренняя гладкая поверхность (диаметр трубы d = 27мм, длина трубы l = 2 м);d ≈ наружная гладкая поверхность (d = 30 мм, l = 2 м); в, г, д ≈ внутренняя поверхностьс винтовой спиралью (d = 51 мм, l = 1,6 м, s/h = 10, в ≈ h=1,85 мм, г ≈ 3,0, д ≈ 5,0).Сплошные линии расчет по формулам работы [6].Наличие редуцирующих веществ в ферментативной среде приводит к уменьшению поверхностного натяжения и,как было установлено экспериментально, снижает интенсивность переноса массы в пленке. Аналогичные результатыбыли получены при исследовании массоотдачи в пленке воды с добавкой поверхностно активных веществ (ПАВ).При стекании пленки жидкости с ПАВ по гладкой поверхности трубы, числе Рейнольдса Re ё10000 и поверхностном натяжении жидкости s = 25Ч10-3 Н/мпроисходит уменьшение коэффициента массоотдачи до пяти раз по сравнению с чистой жидкостью. Однако с увеличениемчисла Рейнольдса влияние ПАВ на массообмен уменьшается. В случае стекания пленки жидкости по поверхностис крупномасштабной шероховатостью снижение коэффициента массоотдачи составляет не более 30% и практическине зависит от нагрузки по жидкости.Проведено исследование [7] влияния неизотермичности процесса на абсорбцию. Такое явлениенаблюдается в промышленном пленочном биореакторе, когда температура пленки t отличается от температуры подаваемогогаза tg. При t > tg происходит испарение воды с поверхности пленки и снижение коэффициентамассоотдачи вдвое. С увеличением числа Рейнольдса и разности температуры между жидкостью и газом влияниенеизотермичности возрастает. Установлено также, что при конденсации влаги из воздуха на поверхность пленкикоэффициент массоотдачи увеличивается до 35%.На основании уравнений сопряженного неэквимолярного тепло- и массообмена проведена [8]обработка опытных данных при абсорбции кислорода из воздуха водой. Подтверждено, что при неизотермическойабсорбции сопротивление массопереносу сосредоточено в фазах. Испарение воды в воздух определяется диффузионнымсопротивлением газовой фазы, в то время как процесс абсорбции кислорода - сопротивлением жидкой фазы, которыесущественно влияют друг на друга. Расчетные зависимости, необходимые для определения коэффициента массоотдачив ферментативной среде, приведены в работе [7].Наличие микроорганизмов в культуральной жидкости, дыхательная активность которых сопоставима со скоростьюабсорбции кислорода, приводит к снижению величины растворенного кислорода в пленке культуральной жидкости.Согласно данным (рис. 4) с увеличением концентрации микроорганизмов в культуральнойжидкости в ней снижается количество кислорода. При концентрации микроорганизмов в жидкости 100 кг/м3накопления кислорода в пленке, при ее стекании по поверхности трубы с винтовой спиралью, практически непроисходит. Расчетные зависимости для определения концентрации газа в жидкости с учетом дыхательной активностимикроорганизмов представлены ранее [7].Рис. 4. Изменение концентрации кислорода в пленке дрожжевой суспензии по длине трубчатойнасадки при d = 51 мм, h = 3 мм, s/h = 10, Re = 50000: Линии - расчет по уравнениям работы [7]при температуре жидкости 38oC; равновесная концентрация кислорода в жидкости 6Ч10-3кг/м3; дыхательная активность микроорганизмов 4,17Ч10-5кг/(кгЧс). Точки: 1 ≈ концентрация микроорганизмов x = 0,001 кг/м3;2 ≈ 50; 3 ≈ 100Результаты исследования теплоотдачи в пленке, стекающей по поверхности с винтовой шероховатостью,представлены на (рис. 5). Наличие искусственной шеpоховатости на поверхности трубыпозволяет увеличить коэффициент теплоотдачи в 1,58 раза. Максимальная интенсивность теплоотдачи достигнутапpи геометрической высоте выступа винтовой спирали h = 0,13 мм. Пpи дальнейшем увеличении h коэффициенттеплоотдачи уменьшается, что обусловлено образованием застойных зон на дне впадины около выступов, наличиемзазоpа между витками винтовой шеpоховатости и повеpхностью трубы, а также изменением стpуктуpы потокажидкости вследствие увеличения газосодеpжания в пленке жидкости.Рис. 5. Зависимость коэффициента массоотдачи a от числа Рейнольдсапленки Re=4 G/n при d = 51 мм;l = 1,9 м; Pr = n/a = 4,2≈5. Экспериментальные точки: 1 ≈ гладкая поверхностьтрубы; 2, 3 и 4 ≈ поверхность с винтовой спиралью, соответственно при h = 2 мм, s/h = 10; h = 3 мм, s/h = 6;h = 0,13 мм, s/h = 10. Линии расчет по уравнениям работы [7].При выращивании дрожжей C. scottii непрерывным способом [9] на гидролизате древесины,с концентрацией редуцирующих веществ в ферментативной среде 40 кг/м3 концентрация абсолютно сухойбиомассы дрожжей составила 64 кг/м3, экономический коэффициент в зависимости от скорости протока(0,18 ≈ 0,27) ч-1 равен 43 ≈ 58%. Полученные данные показали принципиальную возможностьинтенсификации процесса культивирования дрожжей. Пpи проведении исследований оказалось возможным изменятьв широком интервале концентрацию растворенного кислорода в емкости для культивиpования за счет изменениякpатности циpкуляции жидкости чеpез тpубчатые насадки, чего невозможно достигнуть в условиях баpботажа иэpлифта. Реализация свободного стекания пленки культуpальной жидкости в pежиме слабого взаимодействия спотоком воздуха исключила интенсивное пенообpазование и обеспечила pавномеpное pаспpеделение биомассы вобъеме культуpальной жидкости. Небольшие добавки пеногасителя в пpоцессе выpащивания дpожжей стабилизиpовалислой кpупноячеистой пены высотой 30...70 мм в веpхней части емкости для культивирования. Относительновысокая кpатность циpкуляции жидкости (50≈100) и отвод тепла непосpедственно из pеакционной зоны позволилилегко поддеpживать оптимальную температуру феpментации.В пленочном биореакторе с повышением содержания редуцирующих веществ в питательном сусле (S = 1 ≈ 5%)(рис. 6), в отличие от известных способов выращивания, происходит незначительное увеличениеудельных энергозатрат Y на подвод кислорода. Для каждого диаметра трубчатой насадки пленочного биореакторасуществует оптимальный расход культуральной жидкости, при котором достигается наибольший эффект насыщениягаза жидкостью. С увеличением диаметра контактной трубы количество на ступени биореактора уменьшается.Минимальные затраты электроэнергии на подвод газа в культуральную жидкость при установке трубчатойнасадки с винтовой шероховатостью достигаются на длине трубы 1,5 - 2 м, высоте выступа шероховатости h = 4-5 мми параметре шероховатости s/h = 6- 8.Полученные результаты могут служить теоретической основой для модернизации существующей технологиибиохимических производств, обеспечивающей значительное улучшение их экологического состояния и технико-экономических показателей.Рис. 6. Зависимость удельных затрат энергии на подвод кислорода в биореактор от длины насадкипри d = 80 мм; h = 4 мм; s/h = 6; Re = 170000. Линии: 1 ≈ S = 5%, 2 ≈ 3%, 3 ≈ 1%Традиционная схема получения продуктов микробиологического синтеза включает биореактор, систему подготовкивоздуха и установку очистки газа. Вследствие большого объема воздуха, перекачиваемого через биореакторы,установки подготовки воздуха и очистки отработанного газа имеют значительные габариты, что определяет высокуюстоимость оборудования и большие эксплуатационные расходы. В этой связи возникает необходимость созданиятехнологии с использованием отработанного газа.Основной принцип создания экологически чистой технологии состоит в организации замкнутого цикла погазу, реализуемого за счет удаления выделяющихся в реакторе двуокиси углерода и других продуктов метаболизма,возврата очищенного газа в реактор после добавления в него необходимого количества кислорода. Внедрениепредлагаемого способа позволяет достичь полного использования кислорода, повысить стерильность процесса, исключитьлинию подготовки воздуха и его вместе с микроорганизмами в атмосферу. Поглощение двуокиси углерода изгаза может проводиться известными методами химической или физической сорбции (рис. 7).Реализация предлагаемого способа ведения микробиологического синтеза предполагает использование высокоэффективныхпленочных биореакторов, способных перерабатывать высококонцентрированные питательные среды при низкихрасходах потребляемого газа и энергии.Кроме того, разработана [10] технологическая схема с замкнутым циклом по газу приполучении кислорода из атмосферного воздуха путем его контакта с нейтральной жидкостью. В этом случае атмосферныйвоздух поступает в абсорбер, контактирует с нейтральной жидкостью, обладающей большой поглотительнойспособностью по кислороду. Насыщенная кислородом культуральная жидкость поступает в дегазатор, гдеосуществляется выделение кислорода, который затем поступает в биореактор. Газ с продуктами метаболизма избиореактора поступает на очистку в абсорбер, контактирует с абсорбентом, который затем отводится нарегенерацию, а очищенный газ вновь поступает в биореактор.Несомненный интерес представляет разработанный способ совмещенного культивирования микроорганизмов(рис. 8), потребляющих в процессе своей жизнедеятельности кислород и выделяющих двуокисьуглерода, с микроорганизмами, использующими двуокись углерода и выделяющими кислород [11].Такое совмещение апробировано при получении биомассы дрожжей Candida scottii и хлореллы, которая может бытьиспользована в качестве кормовой добавки. Совмещенный способ позволяет организовать экологически чистоеи безотходное производство продуктов микробиологического синтеза при существенном сокращении необходимогодля этой цели оборудования и резком снижении капитальных и эксплуатационных затрат.Рис. 7. Схема выращивания микроорганизмов с замкнутым циклом по газу. 1 ≈ биореактор;2 ≈ абсорбер; 3 ≈ десорбер; Т ≈ теплообменник; С ≈ сепаратор; Е ≈ сборная емкость; К ≈ компрессор; Ф ≈ фильтр.Рис. 8. Схема совмещенного выращивания микроорганизмов. 1 ≈ реактор для дрожжей; 2 ≈реактор для хлореллы; Т ≈ теплообменник; С ≈ сепаратор; Е ≈ сборная емкость; К ≈ компрессор.В заключении следует отметить, что теоретические и экспериментальные разработки по ферментации кормовыхдрожжей в турбулентной пленке культуральной жидкости прошли проверку на Красноярском биохимическом заводе.Выводы1. На основании всестороннего изучения гидродинамики, тепло- и массообмена, биохимического процесса в пленке культуральной жидкости предложено и реализовано новое решение процесса ферментации, позволяющее существенно повысить экологичность предприятий, значительно интенсифицировать массоперенос, заметно снизить расход потребляемого газа и увеличить концентрацию веществ в ферментативной среде, что дает возможность улучшить рентабельность производства.2. Анализ показателей работы биореакторов свидетельствует, что пленочные аппараты являются наиболее совершенным типом оборудования, который может удовлетворять требованиям, предъявляемым к современным биореакторам.3. Разработаны схемы экологически чистой технологии ферментации микроорганизмов, практически исключающие выбросы вредных примесей в атмосферу.4. Проведенные исследования и результаты промышленной апробации свидетельствуют о перспективности применения разработанных подходов для усовершенствования процесса аэробной ферментации.ЛитератураСтепень Р.А., Репях С.М., Бука Э.С. Основы экологии. Красноярск., 1997. 196 с.Николаев Н.А., Войнов Н.А., Марков В.А., Гаврилов А.В. Экологически чистая технология промышленного производства микробного синтеза // Биотехнология. 1993. ╧ 3. С. 23-24.Патент ╧ 2012593 (РФ), МКИ3 С12 М1/4. Аппарат для выращивания микрорганизмов / Войнов Н.А., Николаев Н.А., Коновалов Н.М. // БИ. 1994. ╧ 9.Николаев Н.А., Войнов Н.А. Закономерности гидродинамики и массопереноса в турбулентных пленках жидкости // Изв. ВУЗов. Химия и хим. технол. 1991. ╧12. С. 3-25.Nikolaev N.A., Voynov N.A., Markov V.A. Liquid film bioreactors for cell mass рroduction // Acta Biotechnoloqica. 1991. ╧3. Р. 205-210.Коновалов Н.М., Войнов Н.А., Марков В.А., Николаев Н.А. Массоотдача при свободном стекании пленки жидкости по наружным и внутренним поверхностям труб // Теор. основы хим. технол. 1993. ╧3. С. 309-314.Войнов Н.А. Процесс ферментации кормового белка в пленочных биореакторах; способы интенсификации и методы расчета. Дисс. док. техн. наук. Красноярск. 1995. 370 с.Осипова Л.Э., Войнов Н.А., Николаев Н.А. Моделирование процесса неизотермической абсорбции // Массообменные процессы и аппараты химической технологии: Межвуз. темат. сб. научн. тр. Казань. 1994. С. 108-114.Получение кормовых дрожжей в пленочном биореакторе / Войнов Н.А., Николаев Н.А., Марков В.А., Гаврилов А.В. // Биотехнология. 1993. ╧6. С. 27-28.А.с. 1655980 (СССР), МКИ3 С12 N1/16. Способ получения биомассы микроорганизмов / Николаев Н.А., Войнов Н.А., Марков В.А. // БИ. 1991. ╧ 22.А.с. 1717628 (СССР), МКИ3 С12 N1/16. Способ получения биомассы дрожжей / Войнов Н.А., Марков В.А., Николаев Н.А. // БИ. 1992. ╧9.Поступило в редакцию 27.02.98╘Химия растительного сырья.journal@chemwood.dcn-asu.ruПЮГДЕКШ ЯРЕО-ЮЩПНАХЙЮ ЙСОХРЭ fifa 2006 ПНЛ ДНЯРЮБЙЮ БХДЕНЯЗЕЛЙЮ РНПФЕЯРБН ЙАЕ ЙСОХРЭ ЮПУХБЮРНП УХЛВХЯРЙЮ ДНЯРЮБЙЮ ЙЮИР ОХКНРЮФМШИ ЦЕМЕПЮЖХЪ ЙХЯКНПНДЮ ЬЮЛОЮМЯЙХИ ГЮЙЮГ АСЙЛЕЙЕПЯЙХИ ЙНМРНПЮ ТЮБНПХР ЙСОХРЭ ЯРХПЮКЭМШИ ЯЕМЯНПМШИ ДХЯОКЕИ ЩДЮЯ-134 ЮДЕМНЛЮ ОПЕДЯР.Ф-ГШ КЕВЕМХЕ ОЮОХККНЛЮ ПЕГЙЮ ПСЙЮБХЖЮ ОНКСВЕМХЕ БШОХЯЙЮ ЕЦПО НАГБНМ БШДЕКЕМХЕ ЙХЯКНПНДЮ